Обобщены современные фундаментальные и экспериментальные знания об эффективности, возможных механизмах и целесообразности применения экстракта растительного происхождения в качестве кормового компонента. Объектом исследования являлись цисты и науплии Артемии (Artemia salina) алтайской популяции. Цель исследования - изучить влияние экстракта проантоцианидов виноградных косточек (ЭПВК) на инкубационную активность и биоинкапсуляционные свойства науплиусов артемии. Задача эксперимента - исследовать ЭПВК в концентрации 7 и 14 мг/мл в качестве активатора и антиоксиданта. Инкубация цист проводилась стандартным методом в аппаратах «Вейса» без декапсуляции. В результате проведенных опытов установлено увеличение вылупления науплиусов с одновременным повышением антиоксидантного статуса. Процент выклева определяли через 24 ч и 36 ч после начала инкубации, подсчитывая свободноплавающие науплии в поле зрения микроскопа. Выход живых науплиусов артемии составил от 65 до 85%. Полученные образцы живых науплиусов артемии исследованы на суммарную концентрацию водорастворимых антиоксидантов (СКВА) как в нативном виде, так и после высушивания при 60 °C. Уровень антиоксидантов в нативных образцах составлял 0,575-0,661 мг/г, после высушивания - 3,08-3,64 мг/г. Результаты исследования расширяют знания о влиянии методов получения живого корма для аквакультуры путем добавления девяностопятипроцентного экстракта проантоцианидов виноградных косточек (Vitis vinifera L.) в инкубационный раствор. Это позволяет повысить эффективность инкубации и антиоксидантную активность свободно плавующих науплиев артемии, что может повысить питательную ценность стартовых кормов для личинок рыб.
экстракт проантоцианидов виноградных косточек, науплиусы артемии, живые корма, антиоксиданты, осетровые рыбы
1. The State of World Fisheries and Aquaculture 2022. Towards Blue Transformation. Rome: FAO, 2022.
2. Стратегия развития рыбхозяйственного комплекса Российской Федерации на период до 2030 года [Электронный ресурс] // Федеральное агентство по рыболовству: [сайт]. URL: https://fish.gov.ru/otraslevaya-deyatelnost/ekonomika-otrasli/(дата обращения 15.07.2024).
3. Савкина Л., Броун Е. Отечественные корма для аквакультуры. [Электронный ресурс] // Ценовик: [сайт] [2024]. URL: https://www.tsenovik.ru/articles/obzory-i-prognozy /otechestvennye-korma-dlya-akvakultury/?ysclid= lx8lxa08ci733611408 (дата обращения 19.06.2024).
4. Волошин Г.В., Акимов Е.Б., Артемов Р.В., Гершунская В.В. Состояние и перспективы развития рынка комбикормов для индустриальной аквакультуры в Российской Федерации. Экономика, международное сотрудничество и нормативные правовые основы рыбохозяйственной деятельности // Труды ВНИРО. 2022. Т. 190. С. 163-169. EDN: https://elibrary.ru/ZDVXMI
5. Портная Т.В., Другакова А.Д. Живые корма в стартовом кормлении молоди осетровых // Актуальные проблемы интенсивного развития животноводства. 2018. № 21-1. С. 180-186. EDN: https://elibrary.ru/XSFQKL
6. Чебанов М.С., Галич Е.В. Руководство по искусственному воспроизводству осетровых рыб // Технические доклады ФАО по рыбному хозяйству и аквакультуре. № 558. Анкара: ФАО. 2011. 297 с.
7. Azra M.N., Noor M.I.M., Burlakovs J. [et al.] Trends and New Developments in Artemia Research // Animals (Basel). 2022. № 12(18): 2321.
8. Sorgeloos P., Dhert P., Candreva P. Use of the brine shrimp, Artemia spp., in marine fish larviculture. Aquaculture. 2001. Vol. 200. P.147-159. EDN: https://elibrary.ru/ARAKKH
9. Wang Y., Zhang D., Zhang M. et al. Effects of ingested polystyrene microplastics on brine shrimp, Artemia parthenogenetica // Environ. Pollut. 2019. Vol. 244. P. 715-722.
10. Riisgård H.U., Jeune N., Pleissner D. [et al.] Adaptation of the brine shrimp Artemia salina (branchiopoda: Anostraca) to filter-feeding: Effects of body size and temperature on filtration and respiration rate //j. Crustac. Biol. 2015. Vol. 35. P. 650-658.
11. Henry J., Bai Y., Williams D. et al. Impact of test chamber design on spontaneous behavioral responses of model crustacean zooplankton Artemia franciscana // Lab. Anim. 2022. Vol. 51 P. 81-88. EDN: https://elibrary.ru/IVHANO
12. Aragão C., Conceição L.E., Dinis M.T., Fyhn H.-J. Amino acid pools of rotifers and Artemia under different conditions: Nutritional implications for fish larvae // Aquaculture. 2004. Vol. 234. P. 429-445. EDN: https://elibrary.ru/XSXMRO
13. Кряхова, Н.В., Ковачева Н.П., Глазунов А.А. Влияние пероксида водорода на выклев науплиев артемии Artemia sp. // Рыбное хозяйство. 2023. № 3. С. 81-87. EDN: https://elibrary.ru/RCDSGC
14. Dey C.J., Tan Q.J., O'Connor C.M. [et al.] Dominance network structure across reproductive contexts in the cooperatively breeding cichlid fish Neolamprologus pulcher // Curr. Zool. 2015. Vol. 61. P. 45-54.
15. Hire J. Effect of probiotic, Bacillus spp. enriched artemia on growth of gold fish, Carassius auratus (Linnaeus, 1758) larvae. //j. Exp. Zool. 2020. Vol. 23. P. 741-745.
16. Hafezieh, M., Kamarudin, M.S., Saad, C.R.B. et al. Effect of enriched Artemia urmiana on growth, survival and composition of larval Persian sturgeon // Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 2009. № 9. P. 201-207.
17. Azimirad M., Meshkini S., Ahmadifard N., Hoseinifar S.H. The effects of feeding with synbiotic (Pediococcus acidilactici and Fructooligosa charide) enriched adult Artemia on skin mucus immune responses, stress resistance, intestinal microbiota and performance of angelfish (Pterophyllum scalare) // Fish Shellfish Immunol. 2016. Vol. 54. P. 516-522.
18. Результаты применения биоинкапсулированных науплий артемии в качестве стартового корма для личинки и молоди стерляди / А.С. Елизарова, Г.А. Шишанов, И.Е. Липпо [и др.] // Ветеринария и кормление. 2023. №5. С. 31-34. EDN: https://elibrary.ru/LYURRT
19. Prabakusuma A.S., Wardono B., Fahlevi M. [et al.] A bibliometric approach to understanding the recent development of self-sufficient fish feed production utilizing agri-food wastes and by-products towards sustainable aquaculture // Heliyon. 2023. № 9. e17573. EDN: https://elibrary.ru/ADWQKX
20. European Platform for the Responsible Use of Medicines in Animals (EPRUMA) 2018 [Электронный ресурс] // EPRUMA Best-Practice Framework for the Use of Antibiotics in Food-Producing Animals Reaching for the Next Level. 2018. URL: http://www.epruma.eu/ (дата обращения 11.06.2024).
21. Peng K., Chen B., Wang Y. [et al.] Condensed tannins protect against aflatoxin B1-induced toxicity in Lateolabrax maculatus by restoring intestinal integrity and regulating bacterial microbiota // Aquaculture. 2022. Vol. 555 738255. EDN: https://elibrary.ru/DIERWB
22. Costa J.R., Xavier M., Amado I.R. [et al.] Polymeric nanoparticles as oral delivery systems for a grape pomace extract towards the improvement of biological activities // Mater. Sci. Eng. C. 2021. Vol. 119:111551. EDN: https://elibrary.ru/NDGUSA
23. Farha A.K., Yang Q.-Q., Kim G. et al. Tannins as an alternative to antibiotics // Foo Biosci. 2020. Vol. 38: 100751.
24. Lavens P., Sorgeloos P. Manual on the production and use of live food for aquaculture FAO // Tech. Pap. 1996, 361. P. 295.
25. Fan X., Ma Y., inventor; Hospira. Method to hatch free swimming nauplii from artemia cysts. China patent. 101081015. 2007 Dec 05 URL: https://patents.google.com/patent/WO2008022569A1/en.
26. Gabetta B., Fuzzati N., Griffini A. [et al.] Characterization of proanthocyanidins from grape seeds // Fitoterapia. 2000. Vol. 71. P. 162-175.
27. Aysun C., Leylagul K., Ismail K. [et al.] Effect of grape seed extract on radiation-induced oxidative stress in rat liver // Turkey J. Gastroenterol. 2008. Vol. 19. P. 92-98.
28. Van S.G.Introduction, biology and ecology of Artemia // In: Manual on the production and use of live food for aquaculture. Belgium: Laboratory of Aquaculture and Artemia Reference Center, University of Ghent. 1996. P. 79-136.
29. Яшин А.Я. Методология определения антиоксидантной активности пищевых продуктов и биологических жидкостей // Аналитика. 2021. Т 11. № 5. С. 370-371. EDN: https://elibrary.ru/HXTAIN
30. Navarro J.C., Amat F., Sargent J. R. Lipid composition of cysts of the brine shrimp Artemia sp. from Spanish populations //j. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1992. Vol. 155. P. 123-131.
31. Yasuda A., Natsume M., Sasaki K. [et al.] Cacao procyanidins reduce plasma cholesterol and increase fecal steroid excretion in rats fed a high-cholesterol diet // Biofactors. 2008. Vol. 33. P. 211-223.
32. Tamura T., Inoue N., Ozawa M. [et al.] Peanut-skin polyphenols, procyanidin A1 and epicatechin-(4β→6)-epicatechin-(2β→O→7, 4β→8)-catechin, exert cholesterol micelle-degrading activity in vitro // Biosci Biotechnol Biochem. 2013. Vol. 77:1306-9.
33. Moreno D.A., Poulev A., Brasaemle D.L. et al. Inhibitory effects of grape seed extract on lipases // Nutrition. 2003. Vol. 19. P. 876-879.
34. Киселева Т.Ф. Технология сушки: учеб.-метод. комплекс // Кемеровский технологический институт пищевой промышленности. Кемерово, 2007. 117 с.
